HACETTEPE ÜNİVERSİTESİ TIP FAKÜLTESİ MİKROBİYOLOJİ ve KLİNİK MİKROBİYOLOJİ ANABİLİM DALI TIPTA UZMANLIK EĞİTİMİ MİSYONUMUZ Mikrobiyoloji ve Klinik Mikrobiyoloji alanında güncel eğitim ve öğretim tekniklerinden yararlanılıp teorik ve pratik uzmanlık becerisi kazandırmaktır. VİZYONUMUZ Mikrobiyoloji ve Klinik Mikrobiyoloji alanında teorik ve pratik gelişmeleri yakından takip edebilecek, güncel teknikleri rahatlıkla uygulayıp gelişme ve modifikasyonlarını sağlayabilecek, tanıda modern tekniklerin kullanımını uygulayabilecek ve konusu ile ilgili teorik bilgilerini geliştirebilecek donanımlı uzman hekimlerin yetiştirilmesini sağlamaktır. 2 MİKROBİYOLOJİ ve KLİNİK MİKROBİYOLOJİ ANABİLİM DALI TIPTA UZMANLIK EĞİTİMİ PROGRAMI 1. Uzmanlık eğitimine kabul edilmek için gerekli şartlar Tıp Doktoru olmak TUS sınavında başarılı olmuş olmak 2. Birinci yıl sonunda edinilmesi gereken bilgiler ve beceriler BİLGİLER: Anabilim Dalı öğretim üyeleri tarafından Tıp Fakültesi Dönem 1,2 ve 3’e verilen teorik derslere devam edilmesi ve bu derslerde kapsanan teorik bilgilerin öğrenilmesi Makale saatlerinde uluslararası dergilerde sunulmuş bir makalenin sunumu ve tartışması Haftada bir kez yapılan seminer saatinde sunum ve tartışma (Her araştırma görevlisi yılda bir kez seminer sunar.) BECERİLER: Bakteriyal, fungal, paraziter ve viral enfeksiyonların tanısında direk mikroskopik inceleme yöntemlerinin uygulanması ve yorumlanması Bakteriyal ve fungal enfeksiyonların tanısında kültürde izolasyon, tanımlama ve duyarlılık testlerinin yapılması ve yorumlanması Moleküler mikrobiyolojik tanı yöntemlerinin uygulanması Enfeksiyon hastalıklarının tanısında serolojik yöntemlerin uygulanması ve yorumlanması Öğrencilerin pratik eğitimleri için yapılan laboratuvar çalışmalarında yardımcı olarak aktif görev alması 3. İkinci yıl sonunda edinilmesi gereken bilgiler ve beceriler BİLGİLER Anabilim Dalı öğretim üyeleri tarafından açılan doktora derslerine devam edilmesi ve bu derslerde kapsanan teorik bilgilerin öğrenilmesi Makale saatlerinde uluslararası dergilerde sunulmuş makalelerin sunumu ve tartışması 3 Haftada bir kez yapılan seminer saatinde sunum ve tartışma (Her araştırma görevlisi yılda bir kez seminer sunar.) BECERİLER Birinci yılda edinilen beceri ve deneyimlerin pekiştirilmesi Öğrencilerin pratik eğitimleri için yapılan laboratuvar çalışmalarında yardımcı olarak görev alması 4. Üçüncü yıl sonunda edinilmesi gereken bilgiler ve beceriler BİLGİLER Danışman öğretim üyesi denetiminde bilimsel çalışma planlama ve yürütme Makale saatlerinde uluslararası dergilerde sunulmuş makalelerin sunumu ve tartışması Haftada bir kez yapılan seminer saatinde sunum ve tartışma (Her araştırma görevlisi yılda bir kez seminer sunar.) BECERİLER Birinci yılda edinilen beceri ve deneyimlerin pekiştirilmesi Enfeksiyon hastalıklarının tanısında ileri ve özel yöntemlerin uygulanması ve yorumlanması Öğrencilerin pratik eğitimleri için yapılan laboratuvar çalışmalarında yürütücü olarak görev alması 5. Dördüncü yılın sonunda edinilmesi gereken bilgi ve beceriler BİLGİLER Tez çalışmasının planlanması ve uygulanması Danışman öğretim üyesi denetiminde bilimsel çalışma planlama ve yürütme Makale saatlerinde uluslararası dergilerde sunulmuş makalelerin sunumu ve tartışması Haftada bir kez yapılan seminer saatinde sunum ve tartışma (Her araştırma görevlisi yılda bir kez seminer sunar.) BECERİLER Bir Klinik Mikrobiyoloji Laboratuvarı’nı bağımsız olarak yürütecek düzeyde deneyim ve beceri kazanmış olması 4 Öğrencilerin pratik eğitimleri için yapılan laboratuvar çalışmalarında yürütücü olarak görev alması Tez çalışmasını tamamlaması 6. Uzman olabilme koşulları Klinik Patoloji, Parazitoloji, Mikoloji, Moleküler Mikrobiyoloji, Özel Bakteriyoloji, Viroloji, boya ve besiyeri rotasyonları sonunda yapılan sınavlarda başarılı olmuş olmak (Rotasyon sınavında baraj 70’dir. Başarılı olamamış araştırma görevlisi, tez alamaz ve o rotasyonu tekrar eder. Tekrarlanan sınavda aldığı puan yine 70’in altında ise tüm rotasyon sınavlarının ortalamasına bakılır. Ortalaması 70 ya da üzerinde ise başarılı kabul edilir ve tez alma hakkını kazanır.) Tez çalışmasını tamamlamış olmak İkinci yılın sonunda yapılan yeterlılik sınavında başarılı olmuş olmak Sözlü ve yazılı uzmanlık sınavında başarılı olmuş olmak (Uzmanlık sınavında baraj 75’dir.) 7.Yeterlilik sınavı İkinci yılın sonunda yapılır.Tez alma hakkı kazanmak için sınavda başarılı olmak gerekir. (İlk sınavda başarılı olamamış araştırma görevlilerine bir sınav hakkı daha tanınır.) 5 ROTASYON PROGRAMI 1.Klinik Patoloji Laboratuvarı Rotasyonu: 8 hafta bakteriyoloji, 4 hafta seroloji 2. Parazitoloji Laboratuvarı Rotasyonu: 6 hafta 3.Mikoloji Laboratuvarı Rotasyonu: 8 hafta (Son 2 hafta Dermatoloji Anabilim Dalı’nda rotasyon) 4. Moleküler Mikrobiyoloji Laboratuvarı Rotasyonu: 8 hafta 5.Özel Bakteriyoloji Laboratuvarı Rotasyonu: 4 hafta 6. Viroloji Laboratuvarı Rotasyonu: 8 hafta 7.Cam ve plastik malzemelerin, besiyerlerinin ve boyaların hazırlanması ve aletlerin kullanımı rotasyonu: 6 hafta 8. Nükleer Tıp Rotasyonu: 12 hafta 9. İç Hastalıkları Anabilim Dalı İnfeksiyon Hastalıkları Ünitesi Rotasyonu: 12 hafta 6 KLİNİK PATOLOJİ LABORATUVARI ROTASYONU I.PRATİK EĞİTİM A.Besiyeri, ekim, kültür, tanımlama, duyarlılık testleri: DEĞERLENDİRME Besiyeri Aerop Anaerop Mantar Kan kültürü Tüberküloz Ekim Kültür değerlendirme Bakteri tanımlama Antibiyotik duyarlılık testleri 7 B. Serolojik testler: DEĞERLENDİRME Lam Tüp Direk İndirek ANA AMA APA ASMA Endomisyum Liver Kidney Mikrozomal C.pneumoniae C.trachomatis L.pneumophila DFA C.trachomatis Immun blot ENA İndirek hemaglutinasyon Echinococcus Aglutinasyon ELISA IFA II. ROTASYON SINAVI NOTU: III. SONUÇ: Başarılı Başarısız 8 PARAZİTOLOJİ LABORATUVARI ROTASYONU I.PRATİK EĞİTİM: DEĞERLENDİRME Kan yaymalarının hazırlanışı, boyama teknikleri Kalın damla ve ince yayma (Sıtma) Toxoplasma gondii-preparat (Giemsa) Mikrofilarya-preparat Leishmania-amastigot ve promastigot-preparat Leishmania-kültür Trypanosoma-preparat Giardia-kist ve trofozoit-preparat Entamoeba-preparat Trikrom boyası-bilgi ve uygulama Cryptosporidium parvum-preparat Modifiye asit faz boyama yöntemi-uygulama Pneumocytis carinii-preparat Gaita örneklerinin hazırlanış yöntemi Gaitada parazit yumurtalarının incelenmesi Kist sıvısında skoleks aranması Trichomonas vaginalis-İdrar ve vajen sürüntüsünde aranması II. ROTASYON SINAVI NOTU: III. SONUÇ: Başarılı Başarısız 9 MİKOLOJİ LABORATUVARI ROTASYONU I.PRATİK EĞİTİM: DEĞERLENDİRME 1. Klinik örneklerin direk mikroskopik incelemesi KOH Çini mürekkebi Laktofenol pamuk mavisi Gram boyası Metilen mavisi Modifiye Ziehl-Nielsen boyama yöntemi 2. Klinik örneklerden mantar izolasyonu Sabouraud dekstroz agar (SDA) Gentamisin/kloramfenikollü SDA Mikobiyotik agar 3. İzole edilen mantar türünün tanımlanması a. Mayalar Koloni morfolojisi Mikroskopik görünüm Germ tüp testi Fermentasyon-assimilasyon reaksiyonları Mısır unlu tween 80 besiyerinde morfolojik görünüm Üreaz aktivitesinin saptanması V8 besiyerinde askospor oluşumu b. Küfler Koloni morfolojisi Mikroskopik görünüm, konidyum ve hif morfolojisi Patates dekstroz agarda sporulasyon Dermatofit grubu küf mantarının tanımlanması için kullanılan diğer yöntemler: Kıl delme deneyi, üreaz aktivitesinin saptanması, pirinçli besiyerinde üreme özellikleri, BCP glucose milk solid agarda üreme özellikleri 4. Serolojik yöntemler Serum ve BOS örneklerinde Cryptococcus neoformans antijeninin lateks aglütinasyon yöntemiyle saptanması Pneumocystis carinii-immünofloresans yöntemi ile saptanması 5. Antifungal duyarlılık testleri Yöntem: Küf (M38-P) ve maya (M27-A) mantarları için önerilen mikrodilüsyon NCCLS-referans yöntemi Antifungal ajanlar: Amfoterisin B, flukonazol, itrakonazol II. ROTASYON SINAVI NOTU: III. SONUÇ: Başarılı Başarısız 10 MOLEKÜLER MİKROBİYOLOJİ LABORATUVARI ROTASYONU I.PRATİK EĞİTİM: DEĞERLENDİRME 1.Çözelti hazırlama Tampon çözeltilerin hazırlanması, içerikleri, kullanım amaçları pH ölçme ve ayarlama 2.Elektroforez İşleyiş mekanizmaları, çeşitleri, kullanım amaçları Agaroz jel elektroforezi: Agaroz, düşük derecede eiyen agaroz, NuSieve agaroz uygulamaları Poliakrilamit jel elektroforezi: DNA ve protein elektroforezleri, mutasyon saptama jeli ve heterodupleks analizi 2.DNA izolasyonu ve saflaştırması Plazmid izolasyonu Çözeltiler ile DNA saflaştırılması Elektroforez ile DNA saflaştırılması Spektrofotometre kullanımı, DNA ve protein düzeyinin belirlenmesi 3.Nükleik asit çoğaltılması Polimeraz zincirleme tepkimesi (PCR) Florometrik ölçümlü PCR: Örnekte nükleik asit düzeyinin belirlenmesi, viral yük, protein ekspresyonu, erime derecesi ölçümü ile mutasyın saptanması 4.Moleküler klonlama Restriksiyon enzimleri, uygulama Moleküler klonlama vektörleri, bildirici genler, T-klonlama vektörleri DNA ligasyonu, genlerin klonlama vektörlerine eklenmesi Bakterilerin plazmidler ile transformasyonu II. ROTASYON SINAVI NOTU: III. SONUÇ: Başarılı Başarısız 11 ÖZEL BAKTERİYOLOJİ ROTASYONU I.PRATİK EĞİTİM: DEĞERLENDİRME Solunum yolu örneklerinin kantitatif yöntemle ekimi ve değerlendirilmesi Manüel bakteriyolojik izolasyon ve tanımlama yöntemleri Katalaz Oksidaz TSI, üre, sitrat, indol A-grubu beta-hemolitik streptokok izolasyonu Streptococcus pneumoniae izolasyonu Streptococcus pneumoniae -kapsül şişme testi Haemophilus türlerinin izolasyonu Haemophilus türlerinin tanımlanması- X ve V faktörü gereksinim testleri İzole edilen patojenlerin antibiyotik duyarlılık testleri “Checkerboard” yöntemi ile in vitro antibiyotik etkileşimlerinin araştırılması Örneklerin Gram boyalı yaymalarının değerlendirilmesi Kistik fibrozisli olguların mikrobiyolojik değerlendirmesi Pseudomonas aeruginosa koloni tipleri, antibiyotik duyarlılık paterni ve olgunun kliniği arasındaki ilişki Burkholderia cepacia, Stenotrophomonas maltophilia ve Haemophilus influenzae selektif besiyerlerinin hazırlanması ve üreyen suşların değerlendirilmesi Helicobacter pylori Kültür Biyopsi örneğinden direk mikroskopik inceleme (Giemsa) Tanımlama (Biyokimyasal yöntemler) DNA ekstraksiyonu PCR ve jel elektroforezi (üreaz ve cagA gen bölgelerinin tanımlanması) II. ROTASYON SINAVI NOTU: III. SONUÇ: Başarılı Başarısız 12 VİROLOJİ LABORATUVARI ROTASYONU I.PRATİK EĞİTİM: DEĞERLENDİRME Kullanılan alet ve malzemeler, doku kültürü malzemelerinin hazırlanması Doku kültürü için kullanılan vasat ve diğer solüsyonların hazırlanması Primer doku kültürü çalışması. Hazırlama ve idame ettirme Devamlı hücre kültürlerinin hazırlanması, pasajı ve takibi Hücrelerin DMSO veya gliserol içinde dondurulup saklanması Dondurulmuş hücre kültürünün açılması ve hücre üretimi Örneklerden hücre kültürüne virus ekimi, sitopatik etki Virus titresinin TCID50 ile saptanması Viral antijen hazırlanması Hemaglütinasyon testi (Kabakulak, BK virus) Hemaglütinasyon önlenim deneyi Kompleman titre tayini ve kompleman birleşmesi testi Nötralizasyon testinin prensipleri ve uygulanışı İnklüzyon cisimciği aranması, CMV inklüzyon ve Tzank testlerinin uygulanması PCR (CMV, HCV ve Papilloma virus) II. ROTASYON SINAVI NOTU: III. SONUÇ: Başarılı Başarısız 13 BOYA ve BESİYERİ ROTASYONU I.PRATİK EĞİTİM: DEĞERLENDİRME Cam eşyanın temizlenmesi, kullanıma hazırlanması, sterilizasyonu Plastik laboratuvar malzemelerinin kullanımı Öze, iğne, keski, baget, pastör pipeti hazırlama Otoklav, pastör fırını, koagülatör, su banyosu, santrifüj, pH metre, hassas terazi, dsitile su cihazı ve filtrelerin kullanımı Hayvan deneyleri uygulamaları Besiyerlerinin hazırlanması: Adi agar, yatık agar, DST agar Kanlı agar Löffler besiyeri Löwenstein Jensen besiyeri Middlebrook 7H9, 7H10, 7H11 besiyeri Endo agar, EMB agar, Mac Conkey agar Sabouraud dekstroz agar SS agar Tiyoglukolatlı buyyon Üreaz agar TSI agar Glikoz fosfat buyyon Triptofanlı buyyon Antibiyotikli agar ve buyyon Fermentasyon buyyonu Anaerob bakteriler için kullanılan besiyerleri Thayer-Martin besiyeri Alkalen peptonlu su Thiosulfate-citrate bile-sucrose (TCBS) agar Sitrat agar Boyaların hazırlanması: Gram boya seti Metilen mavisi (Loeffler) Neisser boya seti Ziehl-Neelsen boya seti Kinyoun soğuk boyama Auramin florokrom boyama Laktofenol pamuk mavisi Wright, Giemsa boyası II. ROTASYON SINAVI NOTU: III. SONUÇ: Başarılı Başarısız 14